Annexin V-AF647/7-AAD细胞凋亡检测试剂盒
15分钟快速染色 分群清晰易调补偿
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- 产品描述
- 组成成分
- 注意事项
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货号规格
货号 规格 100-103-30 30 次 100-103-60 60 次 100-103-100 100 次 产品简介
本试剂盒用于细胞凋亡的快速检测。在细胞凋亡早期 ,质膜内侧的磷脂酰丝氨酸(phosphotidylserine,PS)会外翻至细胞膜表面;而在凋亡的中后期 ,一些较大分子的化合物 ,如7-氨基放线菌素D(7-Aminoactinomycin D,7-AAD,一种DNA结合染料) ,可进入细胞将细胞核染上红色荧光。7-AAD的发射光谱较PI窄 ,且发射波长更长 ,对其它检测通道的干扰更小 ,在多色荧光分析中是PI的最佳替代品。
Annexin V是一种Ca2+依赖性磷脂结合蛋白 ,能与磷脂酰丝氨酸特异性结合。本试剂盒采用荧光染料AF647标记的 Annexin V作为检测磷脂酰丝氨酸的探针 ,配合7-AAD ,通过使用流式细胞仪 、荧光显微镜或其它荧光检测设备 ,可以快速检测细胞凋亡。因此将Annexin V-AF647与7-AAD进行共染 ,就可以区分不同凋亡时期的细胞。在双色流式细胞仪散点图上, Annexin V-AF647与7-AAD双阴性为正常细胞 ,Annexin V-AF647阳性、7-AAD阴性为早期凋亡细胞 ,Annexin V-AF647与 7-AAD双阳性为晚期凋亡细胞或坏死细胞。
保存条件
本产品冰袋运输;避光保存于2~8℃ , 保质期12个月。Annexin V-AF647和7-AAD Solution需避光保存。
检测方法
(一) 样本染色-悬浮细胞
1. 离心收集所需细胞(1500 rpm,5min);
2. 加入预冷的PBS轻柔重悬细胞 ,离心收集细胞 ,共洗涤两次;
3. 用去离子水将10×Binding Buffer稀释至1×Binding Buffer ,再用1×Binding Buffer重悬细胞 ,调整细胞浓度为1-5×106 cells/mL;
▲流式检测需设置三个对照样品来调节电压和补偿:
空白管:仅用1×Binding Buffer重悬的细胞 ,以评估自身荧光水平 ,并调整仪器电压;
单染管:分别用Annexin V-AF647或7-AAD染色 ,用于调节荧光通道的补偿。
4. 吸取100 μL细胞悬液(细胞总数为1-5×105 cells)至一新EP管中,加入5 μL Annexin V-AF647 ,轻柔混匀 ;再加入5 μL7- AAD ,轻柔混匀 ,室温避光孵育10~15 min;
5. 加入400 μL1×Binding Buffer ,轻柔混匀 。染色后样品尽量在1 h内用流式细胞仪检测。
(一) 样本染色-贴壁细胞
1. 将细胞培养液吸出至一新离心管内 ,接着用预冷的PBS轻柔洗涤贴壁细胞一次 。加入可以覆盖贴壁细胞的胰酶消化液,轻摇使胰酶与细胞充分接触 ,室温消化适当时间 ,轻轻吹打可以使贴壁细胞脱落下来即可;
2. 在细胞中加入上一步骤收集的细胞培养液 ,稍混匀 ,转移至离心管内 ,离心(1500 rpm,5min) ,弃上清;
3. 加入预冷的PBS轻柔重悬细胞 ,离心收集细胞 ,共洗涤两次;
4. 用去离子水将10×Binding Buffer稀释至1×Binding Buffer ,再用1×Binding Buffer重悬细胞 ,调整细胞浓度为1-5×106 cells/mL;
▲流式检测需设置三个对照样品来调节电压和补偿:
空白管:仅用1×Binding Buffer重悬的细胞 ,以评估自身荧光水平 ,并调整仪器电压;
单染管:分别用Annexin V-AF647或7-AAD染色 ,用于调节荧光通道的补偿。
5. 吸取100 μL细胞悬液(细胞总数为1-5×105 cells)至一新EP管中,加入5 μL Annexin V-AF647 ,轻柔混匀 ;再加入5 μL7- AAD ,轻柔混匀 ,室温避光孵育10~15 min;
6. 加入400 μL1×Binding Buffer ,轻柔混匀 。染色后样品尽量在1 h内用流式细胞仪检测。
样品分析
流式细胞仪分析
AF647 最大激发波长为 651 nm,最大发射波长为665nm ;7-AAD 最大激发波长为 545nm ,最大发射波长为 650 nm,可用流式细胞仪 FL3 通道或配备 650 nm 长通滤光片的荧光显微镜检测远红荧光。
常见问题与解决方案
1. 假阳性
阴性对照(未经凋亡诱导的细胞)染色后Annexin V-AF647/7-AAD双阳性比例过高 ,其原因可能是细胞本身活力低 ,因此建议用台盼蓝染色计算细胞活力 ,阴性对照台盼蓝阳性的细胞比例应小于5%。若细胞活力低 ,建议换用其他细胞或重新复苏细胞 ,新复苏的细胞应传代1-2代以后进行实验。
2. Annexin V-AF647染色失败或者阳性率偏低。
首先需要确定实验中所用的凋亡诱导剂是否能产生凋亡。可通过设立阳性对照组来确定(诱导效果确定的阳性药物处理细胞) 。Annexin V-AF647染色失败 ,最常见的操作原因是贴壁细胞消化不当。 Annexin V跟PS的结合需要Ca2+ , Binding Buffer中含有Ca2+ ,含EDTA的胰酶消化会影响染色。
用PBS洗涤细胞沉淀后 ,应尽量去除残余液体。残留PBS中的磷酸根 ,会形成磷酸钙沉淀。
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产品组分
组分名称 100-103-30 100-103-60 100-103-100 Annexin V-AF647 150 µL 300 µL 500 µL 7-AAD Solution 150 µL 300 µL 500 µL 10×Binding Buffer 3 mL 6 mL 10 mL -
注意事项
1. Annexin V-AF647和7-AAD染色前 ,不能用破坏细胞膜完整性的固定剂和穿透剂固定或穿膜。
2. 整个操作过程动作要尽量轻柔 ,请勿用力吹打细胞 ,避免对细胞造成机械性损伤。
3. 对于贴壁细胞 ,消化过程需注意:
1) 贴壁细胞诱导细胞凋亡时如有漂浮细胞 ,需收集漂浮细胞和贴壁细胞合并染色;
2) 胰酶消化时间过短 ,细胞需要用力吹打才能脱落 ,容易造成细胞膜的损伤 ,导致7-AAD摄入过多;消化时间过长,细胞膜同样易造成损伤 ,甚至会影响细胞膜上PS与Annexin V-AF647的结合。
3) 尽量使用不含EDTA的胰酶 ,EDTA会影响Annexin V与PS的结合;如使用含EDTA的胰酶消化细胞 ,需要在染色之前用PBS洗涤细胞两次以去除EDTA。
4. 如果样品来源于血液 ,请务必除去血液中的血小板 。因为血小板含有PS ,能与Annexin V结合 ,从而干扰实验结果 。可以使用含有EDTA的缓冲剂并在1,500 rpm(200×g)离心洗去血小板。
5. Annexin V-AF647和7-AAD是光敏物质 ,在操作时请注意避光。
6. 为了您的安全和健康 ,请穿实验服并戴一次性手套操作。
关键词
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