通用型植物总RNA提取试剂盒上市：双裂解液体系，多糖多酚样本也能高效提取高质量RNA | 信天翁生物
发布时间:2026-07-24
植物RNA提取相对动物组织、细胞提取更为复杂，面对种类繁多、成分复杂的植物样本，实验人员往往需要花费大量精力在裂解液的选择、操作流程的优化以及RNA产率和纯度的平衡上。
多糖多酚的干扰、高淀粉样本的胶化、基因组DNA的残留、操作过程中的RNA降解风险……每一个环节都可能影响最终实验结果的有效性。传统方法中，酚氯仿抽提、醇类沉淀等步骤不仅耗时费力，更引入了额外的安全隐患。
针对上述问题，信天翁生物正式推出通用型植物总RNA提取试剂盒（货号：400-108）。该试剂盒提供两套独立的裂解体系，适配广泛植物样本类型，最快17分钟完成提取，无需使用有毒试剂，为植物分子生物学研究提供一套高效、稳定、安全的解决方案。
双裂解液体系，针对性应对复杂样本
不同植物组织所含的次生代谢产物差异显著，单一裂解液难以覆盖所有样本类型。本试剂盒配备 Lysis Buffer A 与 Lysis Buffer B 两套裂解体系：
Lysis Buffer A：适用于多数普通植物组织（如幼嫩叶片、茎、根）及多酚含量较高的样本（如月季花瓣、茶树叶片、柑橘叶片）。
Lysis Buffer B：专为高淀粉含量样本（如土豆、红薯、板栗）及复杂多酚类样本（如松针、棉花叶片）优化，有效避免样本裂解后形成胶状物，有助于保证RNA释放效率。
两种体系相互补充，使试剂盒能够从容应对常规及疑难植物样本的提取需求。
柱上DNase I消化，有效降低基因组污染
RNA产物中残留的基因组DNA是影响下游定量分析与建库质量的主要因素之一。本试剂盒整合DNase I柱上消化步骤，在RNA结合柱上直接完成DNA去除，操作简便。标准消化时间为5分钟，可根据实验要求适当延长至10分钟，灵活控制残留水平，有效保障RNA纯度满足RT-PCR、荧光定量PCR、RNA建库等高灵敏度实验的要求。
操作流程简化，17分钟完成提取
本试剂盒摒弃了传统的酚氯仿抽提及醇类沉淀步骤，整个提取流程仅需约17分钟。操作步骤清晰、衔接紧凑，有效缩短实验周期，同时减少样本在操作过程中的降解风险，有利于获得完整性较好的总RNA。
全程不接触酚氯仿、β-巯基乙醇等有毒试剂，无需通风橱操作，实验过程更安全便捷。
适用范围广泛，下游实验兼容性强
该试剂盒适用于多种植物组织类型，推荐样本投入量及裂解液选择参考如下：
| 样本类型 | 推荐投入量 | 推荐裂解液 |
|---|---|---|
| 普通植物组织（幼嫩叶片、茎、根） | 50-100 mg | Lysis Buffer A |
| 淀粉含量高的植物组织 | 50-100 mg | Lysis Buffer B |
| 多酚含量高的植物组织 | 50-100 mg | Lysis Buffer A |
| 复杂多酚类组织 | 50-100 mg | Lysis Buffer B |
| 水果果肉 | 100-200 mg | Lysis Buffer A |
提取获得的总RNA可广泛应用于RT-PCR、荧光定量PCR、RNA文库构建、芯片分析、Northern Blot、Dot Blot及分子克隆等下游实验，满足不同研究场景的需求。
数据展示
普通植物根茎及叶片提取效果：
【水稻叶、辣椒叶、番茄叶、小麦叶、茄子叶、扁豆叶、本生烟叶RNA电泳图】
| 样本 | A260/A280 | A260/A230 | 浓度(ng/μL) | 得率（μg/10 mg） |
|---|---|---|---|---|
| 91mg水稻叶 | 2.085 | 2.365 | 1273.72 | 8.41 |
| 97mg小麦叶 | 2.088 | 2.347 | 724.512 | 4.47 |
| 91mg辣椒叶 | 2.088 | 2.286 | 843.745 | 5.56 |
| 80mg番茄叶 | 2.108 | 2.468 | 1197.57 | 8.98 |
| 105mg玉米叶 | 2.114 | 2.455 | 629.117 | 3.59 |
| 97mg茄子叶 | 2.109 | 2.4 | 1844.19 | 11.4 |
| 75mg扁豆叶 | 2.114 | 2.202 | 1112.21 | 8.9 |
| 90mg绿萝叶 | 2.064 | 2.211 | 190.886 | 1.4 |
| 50mg生菜叶 | 2.103 | 2.326 | 308.103 | 1.8 |
| 50mg大豆茎 | 2.03 | 2.16 | 271.975 | 1.6 |
| 75mg烟草叶 | 2.169 | 2.241 | 563.428 | 4.5 |
| 73mg黄瓜叶 | 2.138 | 2.429 | 370.856 | 3.0 |
| 100mg拟南芥叶 | 2.09 | 2.262 | 328.455 | 2.0 |
| 100mg大豆茎 | 2.049 | 1.979 | 152.817 | 0.9 |
| 80mg大豆根 | 2.108 | 2.058 | 186.307 | 1.4 |
| 120mg月季花花瓣 | 2.017 | 1.728 | 260.56 | 1.3 |
| 70mg月季叶片 | 2.074 | 2.301 | 444.150 | 3.81 |
| 75mg金桔花瓣 | 2.102 | 2.382 | 332.824 | 2.66 |
| 80mg龙井茶叶 | 2.046 | 2.254 | 283.743 | 2.16 |
| 100mg铁观音茶叶 | 2.042 | 2.268 | 278.779 | 1.67 |
| 110mg金桔叶 | 2.122 | 2.449 | 366.642 | 2.0 |
多糖多酚植物提取效果：
| 样本 | A260/A280 | A260/A230 | 浓度(ng/μL) | 得率（μg/10 mg） |
|---|---|---|---|---|
| 100mg土豆块茎 | 2.106 | 2.372 | 488.354 | 1.95 |
| 100mg芋仔 | 2.010 | 2.235 | 154.308 | 0.62 |
| 95mg鲜板栗 | 2.094 | 2.411 | 953.970 | 4.02 |
| 95mg鲜荸荠（马蹄） | 2.080 | 1.962 | 73.863 | 0.31 |
| 95mg鲜玉米粒 | 2.062 | 2.365 | 413.736 | 1.74 |
| 95mg板栗薯 | 2.107 | 2.468 | 347.278 | 1.46 |
| 60mg红薯 | 2.095 | 2.466 | 505.626 | 3.37 |
| 100mg松针 | 2.046 | 2.301 | 276.283 | 1.11 |
| 75mg棉花叶 | 2.135 | 2.608 | 483.725 | 2.58 |
注意事项
1. 首次使用前，请严格按照说明书要求向CB Buffer和Wash Buffer中加入指定体积的无水乙醇。
2. Lysis Buffer若因低温出现结晶析出，于55°C温水孵育至澄清即可正常使用。
3. 建议使用无RNA酶的耗材，并在超净工作台中对Elution Buffer进行小份分装，避免反复取用造成污染。
4. 对于珍稀或提取难度较高的样本，建议正式实验前先进行小规模预实验，确认提取效果后再扩大样本量。
常见问题
Q：Lysis Buffer出现浑浊或结晶析出，还能正常使用吗？
可以。Lysis Buffer受温度变化的影响可能会因结晶析出而变浑浊，属于正常现象。使用前将瓶置于55°C温水孵育，偶尔摇动，直至溶液完全恢复澄清透明即可正常使用，不影响提取效果。
Q：Lysis Buffer A和Lysis Buffer B应该如何选择？
若样本为常规幼嫩组织（水稻、拟南芥、烟草等）或多酚类样本（花瓣、茶树叶等），优先选择Lysis Buffer A。若为高淀粉含量样本（土豆、红薯、板栗）或复杂多酚类样本（松针、棉花叶片），则建议使用Lysis Buffer B。对于不确定类型的样本，可分别用两种裂解液进行小量预实验，根据提取效果确定最优方案。
Q：DNase I消化步骤是否可以省略？
如果下游实验对基因组DNA残留不敏感，可以跳过此步骤以缩短操作时间。但对于荧光定量PCR、RNA建库等高灵敏度实验，强烈建议执行DNase I柱上消化，标准消化5分钟即可去除大部分gDNA，若对残留要求极高可延长至10分钟。
Q：RNA洗脱时Elution Buffer的用量如何选择？
推荐用量为30-100 μL。若预期RNA产率较低，建议使用30-50 μL以获得较高浓度的RNA产物；若样本RNA丰度高，可适当增加洗脱体积以提高回收率。需注意，减少洗脱体积会相应降低洗脱效率，建议根据样本类型和实验需求进行优化。
Q：提取的RNA如何保存？
建议洗脱后立即进行下游实验。如需保存，可置于-80°C冰箱冻存。应避免反复冻融，以免造成RNA降解。首次使用Elution Buffer前，建议在超净工作台中小份分装，防止多次取用引入RNase污染。
Q：针对珍稀或难提样本，有什么建议？
对于珍稀样本或首次尝试的复杂样本，强烈建议先用少量样本进行预实验，确认提取效果（包括产率、纯度和完整性）后再放大到正式实验用量。这样可以最大程度避免珍贵样本的浪费。
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